蒂姆硫化法银染(Timm’s sulfide silver staining)是由蒂姆建立的用于观察脑组织和其它组织中(例如胰腺、小肠、睾丸、肾脏等)微量金属元素锌,以及其它重金属元素,例如铜、镍、钴和铁等的染色。主要用于观察中枢神经系统中含锌神经元,以及新轴突分枝(sprouted axon)和轴突终端(axon terminal)等结构,分析大脑灰质内部的海马中轴突终端(突触泡囊synaptic vesicle)、苔藓终端(齿状颗粒细胞dentate granule cells)中的反应性锌的分布,与突触活性和膜去极化的关系,研究神经退行性和癫痫病理性变化机制。其原理在于使用硫化物,与组织中的游离金属元素反应成为不溶性复合物沉积,进而在还原剂的作用下,金属硫化物催化还原离子银为可见金属银沉积,呈现黑色,此为金属自显影术(autometallography,AMG)。新型蒂姆硫化法银染(neo-TIMM)具有显示(visualization)改善的优点。
产品内容
HPBIO硫化液(Reagent A) 500毫升
HPBIO固着液(Reagent B) 500毫升
HPBIO清理液(Reagent C) 100毫升
HPBIO染色液A(Reagent D) 5 毫升
HPBIO染色液B(Reagent E) 100微升
产品说明书 1份
保存方式
保存在4℃冰箱里,避免光照;有效保证3月
用户自备
PBS缓冲液:用于灌注
无离子水:用于组织清洗
1.5毫升离心管:用于工作液配制的容器
无菌镊子:用于转移动物脑组织
小型玻璃染色缸:用于组织或切片处理的容器
切片机:用于组织切片
明胶化载玻片和盖玻片:用于切片后铺片
中性树脂:用于切片封片
光学显微镜:用于切片染色后观察分析
实验步骤
一、 样本固着处理
1. 常规麻醉动物和手术(建议:使用用户自备的4℃预冷的PBS由心脏处灌注约5至10分钟,去除血液直至澄清,肝脏显示灰白)
2. 使用适量的(30毫升)4℃预冷的HPBIO硫化液(Reagent A)灌注处理(建议:至少10分钟,肝脏显示发黑)
3. 使用适量的(30毫升)4℃预冷的HPBIO固着液(Reagent B)灌注处理
4. 即刻小心取出脑组织(组织显示蓝灰色调)
5. 小心放进20毫升HPBIO固着液(Reagent B)里
6. 置于4℃冰箱里浸泡孵育60分钟
7. 转移到20毫升HPBIO硫化液(Reagent A)里
8. 置于4℃冰箱里浸泡孵育30分钟
9. 即刻用无菌镊子夹起组织块
10. 放进用户自备的无离子水清洗2分钟
11. 用绵纸吸干组织快
12. 即刻进行常规4℃冰箱里30%蔗糖脱水过夜和OCT处理后包埋
13. 在-20℃条件下进行缓慢冰冻切片,为30微米厚,并铺片在明胶化载玻片上
14. 置于-20℃冰箱里保存
二、 样本染色处理
染色开始前,取出HPBIO染色液A(Reagent D)置于室温下预热,然后移取1毫升HPBIO染色液A(Reagent D)到1.5毫升离心管,加入15微升HPBIO染色液B(Reagent E),混匀后,标记为HPBIO染色工作液,置于暗室里备用。然后进行下列操作
1. 取出10片待测的30微米厚的冰冻组织切片
2. 小心加上200微升HPBIO清理液(Reagent C)铺满整个切片样品表面
3. 小心移去切片上的HPBIO清理液(Reagent C)
4. 小心加上200微升HPBIO染色工作液,铺满整个切片样品表面
5. 26℃温度下孵育50分钟,避免光照
6. 小心移去切片上的HPBIO染色工作液
7. 室温下,小心将切片置入50毫升HPBIO清理液(Reagent C)中孵育10分钟
8. 小心移去切片上的HPBIO清理液(Reagent C)
9. (选择步骤)进行复染操作(建议使用HPBIO甲苯酚紫(CRESYL VIOLET)复染试剂盒 或HPBIO中性红复染试剂盒 )
10. 透明处理
11. 放上盖玻片或封片(中性树脂)
12. 即刻在一般光学显微镜下观察:含锌神经细胞体,例如锥体细胞、齿状颗粒细胞、突触泡囊等,呈现黑色(如果复染――细胞核呈现蓝色,胞浆尼氏(体)物质呈现粉红至紫色)
13. 齿状回内分子层苔藓纤维出芽(mossy fiber sprouting)评分
14. 其它结构区域染色评分
产品内容
HPBIO硫化液(Reagent A) 500毫升
HPBIO固着液(Reagent B) 500毫升
HPBIO清理液(Reagent C) 100毫升
HPBIO染色液A(Reagent D) 5 毫升
HPBIO染色液B(Reagent E) 100微升
产品说明书 1份
保存方式
保存在4℃冰箱里,避免光照;有效保证3月
用户自备
PBS缓冲液:用于灌注
无离子水:用于组织清洗
1.5毫升离心管:用于工作液配制的容器
无菌镊子:用于转移动物脑组织
小型玻璃染色缸:用于组织或切片处理的容器
切片机:用于组织切片
明胶化载玻片和盖玻片:用于切片后铺片
中性树脂:用于切片封片
光学显微镜:用于切片染色后观察分析
实验步骤
一、 样本固着处理
1. 常规麻醉动物和手术(建议:使用用户自备的4℃预冷的PBS由心脏处灌注约5至10分钟,去除血液直至澄清,肝脏显示灰白)
2. 使用适量的(30毫升)4℃预冷的HPBIO硫化液(Reagent A)灌注处理(建议:至少10分钟,肝脏显示发黑)
3. 使用适量的(30毫升)4℃预冷的HPBIO固着液(Reagent B)灌注处理
4. 即刻小心取出脑组织(组织显示蓝灰色调)
5. 小心放进20毫升HPBIO固着液(Reagent B)里
6. 置于4℃冰箱里浸泡孵育60分钟
7. 转移到20毫升HPBIO硫化液(Reagent A)里
8. 置于4℃冰箱里浸泡孵育30分钟
9. 即刻用无菌镊子夹起组织块
10. 放进用户自备的无离子水清洗2分钟
11. 用绵纸吸干组织快
12. 即刻进行常规4℃冰箱里30%蔗糖脱水过夜和OCT处理后包埋
13. 在-20℃条件下进行缓慢冰冻切片,为30微米厚,并铺片在明胶化载玻片上
14. 置于-20℃冰箱里保存
二、 样本染色处理
染色开始前,取出HPBIO染色液A(Reagent D)置于室温下预热,然后移取1毫升HPBIO染色液A(Reagent D)到1.5毫升离心管,加入15微升HPBIO染色液B(Reagent E),混匀后,标记为HPBIO染色工作液,置于暗室里备用。然后进行下列操作
1. 取出10片待测的30微米厚的冰冻组织切片
2. 小心加上200微升HPBIO清理液(Reagent C)铺满整个切片样品表面
3. 小心移去切片上的HPBIO清理液(Reagent C)
4. 小心加上200微升HPBIO染色工作液,铺满整个切片样品表面
5. 26℃温度下孵育50分钟,避免光照
6. 小心移去切片上的HPBIO染色工作液
7. 室温下,小心将切片置入50毫升HPBIO清理液(Reagent C)中孵育10分钟
8. 小心移去切片上的HPBIO清理液(Reagent C)
9. (选择步骤)进行复染操作(建议使用HPBIO甲苯酚紫(CRESYL VIOLET)复染试剂盒 或HPBIO中性红复染试剂盒 )
10. 透明处理
11. 放上盖玻片或封片(中性树脂)
12. 即刻在一般光学显微镜下观察:含锌神经细胞体,例如锥体细胞、齿状颗粒细胞、突触泡囊等,呈现黑色(如果复染――细胞核呈现蓝色,胞浆尼氏(体)物质呈现粉红至紫色)
13. 齿状回内分子层苔藓纤维出芽(mossy fiber sprouting)评分
评分 | 特征 |
0 | 未见颗粒 |
1 | 偶见颗粒 |
2 | 较多颗粒,不连续分布 |
3 | 较多颗粒 |
4 | 较多颗粒,连续分布 |
5 | 颗粒致密成层状带 |
14. 其它结构区域染色评分
评分 | 特征 |
0 | 染色阴性 |
1 | 染色很浅 |
2 | 染色较浅 |
3 | 中等染色 |
4 | 致密较深染色 |